你好,欢迎来到! 设为首页 收藏本站
联系电话
论文范文 当前位置: > 写作指南 > 论文范文 >

色素上皮细胞衍生因子与脉络膜新生血管性疾病.

时间:2018-10-10 14:29来源:未知 作者:韩渊慧 , 谢伯林 , 点击:
【摘要】色素上皮细胞衍生因子(pigment epithelium?derived factor,PEDF)是一种分泌蛋白,相对分子量为50000,属于丝氨酸超家族的一员。近年来大量研究发现PEDF具有多种生物学功效,包括抗新生血管、神经营养及神经保护功能。PEDF是最有效的内源性眼部新生血管
    【摘要】色素上皮细胞衍生因子(pigment epithelium?derived factor,PEDF)是一种分泌蛋白,相对分子量为50000,属于丝氨酸超家族的一员。近年来大量研究发现PEDF具有多种生物学功效,包括抗新生血管、神经营养及神经保护功能。PEDF是最有效的内源性眼部新生血管抑制物。PEDF对于治疗血管增生性疾病及视网膜变性疾病具有广阔的前景,就近年来关于PEDF的研究进展及其与脉络膜新生血管性疾病的相关研究进展给以综述。
  【关键词】  色素上皮细胞衍生因子;脉络膜新生血管性疾病
    0 引言
  色素上皮衍生因子由Tombran?Tink等于1989年首次发现,并从胎儿视网膜色素上皮细胞分泌物中通过离子交换最初分离出。PEDF是相对分子量为50000的蛋白质,是一个没有抑制作用的丝氨酸蛋白酶抑制剂超家族成员, 但它不是蛋白酶的抑制剂, 而是他们的底物。目前发现PEDF是多功能蛋白, 具有神经营养的、亲神经元的、神经保护作用的、抗肿瘤的、抗新生血管的、抗血管通透性的特性。
  1 色素上皮衍生因子
  1.1 PEDF的产生及分布 会计论文发表
  免疫荧光检测人尸体眼发现在视网膜内核层、神经节细胞层、脉络膜、睫状体、角膜上皮细胞、角膜内皮细胞、RPE细胞以及光感受器均有PEDF存在,提示这些细胞可能具有合成和分泌PEDF的能力[1] 。有研究发现,在人胎儿和牛的眼睛中, PEDF 的表达局限在视网膜色素上皮层,分泌到周围的光感受器基质中间[2]。胎儿7wk时,可在RPE 与光感受器细胞中发现PEDF; 18wk时,可在光感受器间基质( interphotoreceptor matrix, IPM)检测出,但是PEDF在早期发挥的作用并没有明确[3]。另外两个PEDF 的主要表达部位在角膜和睫状上皮[4]。玻璃体、房水中也含有PEDF,依物种不同,玻璃体内PEDF浓度为1~2mg/L[5]。除眼部有PEDF的分泌与分布外,新近发现,人脑组织、脑脊液中也有PEDF存在。已明确中枢神经系统中腹侧角运动神经元可以分泌PEDF,室管膜细胞也可产生PEDF。另外,PEDF在肝、睾丸、卵巢、胎盘等组织也有分布,血浆中也可以提纯出PEDF,约5g/L[6]。
  1.2 PEDF抑制新生血管的功能
  Dawson 等在1999年首次发现PEDF 还具有很强的抑制血管的作用,现已经从眼内分离出多种能抑制血管生成的蛋白质,如血管他丁、内皮他丁、抗凝血酶Ⅲ、血小板因子Ⅳ等,其中仅PEDF对维持这些眼内角膜、玻璃体等组织无血管状态具有重要作用[7]。在所有的抗新生血管因子中作用最强的PEDF,其抑制血管新生的能力明显强于内生抑制素制管张素[8]。实验证明[9],PEDF可以在体内拮抗多种管新生因子,并能完全抑制它们活性的发挥。有相应的假说认为PEDF赋予了玻璃体良好的抗血管新活性,它可能也是角膜、玻璃体免受新生血管影响的应因子。现已有大量的动物及临床试验证明,PEDF 能够抑制角膜、脉络膜、视网膜新生血管的形成。Ogata等[10]测定糖尿病视网膜病变、孔源性视网膜剥离或特发性黄斑裂孔而经受玻璃体切除术患者的玻璃体液PEDF中的含量,发现糖尿病视网膜病变的PEDF浓度低,活动性者显著低于非活动性者,而VEGF呈现相反改变。证明了PEDF具有抑制眼新生血管形成的生理活性。Duh等[11]用人重组PEDF治疗视网膜新生血管小鼠模型,发现提高PEDF浓度能抑制视网膜新生血管形成。Gao等[12]在氧诱导的视网膜新生血管大鼠模型中也发现视网膜病理新生血管形成与血管抑制剂和血管刺激剂之间的平衡被打破有关,这一发现进一步证明了PEDF作为血管抑制剂参与了眼后段新生血管形成的调节。
  1.3 PEDF抑制新生血管的机制
  研究表明,新生血管的形成不仅与诱导新生血管因子浓度增高有关,而且与抗血管新生因子水平低有关。现在有多种关于PEDF抗新生血管的机制研究。
  1.3.1 针对新生血管内皮细胞的作用机制
  Stellmach 等[13]认为PEDF可能是通过促进活化的血管内皮细胞凋亡, 使血管内皮细胞对缺氧诱发的新生血管的信号不起反应, 当PEDF处理的动物缺血性视网膜和用赋形剂所处理的对照组相比较,前者凋亡的内皮细胞数比后者高8倍左右[14]。Hutchings等[15]的研究表明, PEDF通过抑制成纤维母细胞生长因子(FGF)对内皮细胞的修复从而抑制血管新生。研究者通过PEDF对糖尿病视网膜病变患者视网膜内皮细胞作用的研究发现, PEDF对不同表型的内皮细胞具有不同的,甚至是相反的作用。同时PEDF也抑制了血管内皮生长因子(VEGF)诱导的MAPK的激活,从而抑制了血管新生。Ren等[16]发现VEGF 与受体结合后, 受体自动磷酸化激活Src FAK Ras 信号传导途径,形成独特信号, 调节细胞增殖和移动。当PEDF 与整联蛋白结合后能释放蛋白酪氨酸磷酸酶阻止VEGF 受体磷酸化, 从而阻断此信号传导通路, 减少了VEGF 引起的血管内皮细胞的增殖和移动。PEDF抑制血管新生依赖Fas/FasL介导的细胞凋亡途径,正常内皮细胞,不表达Fas受体,能够对抗PEDF诱导的细胞凋亡,而VEGF等新生血管诱导因子诱导产生的内皮细胞表达Fas受体, PEDF上调FasL,通过Fas/FasL相互作用,引发细胞凋亡反应,这就解释了PEDF选择性抑制新生血管增生的能力,即只针对新生血管作用,而对已成熟血管无抑制及诱导凋亡的作用。PEDF对内皮细胞的抑制作用呈剂量依赖性,其半数有效剂量为0.4nmol/L 是目前用抑制内皮细胞移行方法测得的活性最高的抑制因子。在超过1.0nmol/L 剂量时PEDF 可以抑制碱性成纤维细胞生长因子诱导的毛细血管内皮细胞增殖,抑制率可达40%[17] 。
  会计论文发表
  1.3.2 针对新生血管周细胞作用机制
  有研究认为PEDF通过其抗氧化特性对周细胞的保护作用而减少新生血管的形成,糖尿病性视网膜病变患者的最早病理改变为视网膜微血管周细胞丧失及功能障碍, 细胞培养证明, AGEs 损伤培养的周细胞, PEDF 可保护周细胞免受AGEs 的损伤, 这一过程是通过PEDF 的抗氧化特性来实现的[18]。另有研究证明,PEDF 能够通过它的抗氧化的特性以及经由谷胱甘肽过氧化物酶途径阻止高糖和过氧化氢诱导的周细胞的凋亡和功能障碍[19]。
  1.3.3 针对新生血管促进因子VEGF作用机制
  PEDF还能 阻止VEGF 在T 细胞中的表达[20],血管血管紧张素II 能够显著的提高VEGF 的水平。PEDF 能够阻止Ang?II 介导的活性氧族在MOLT? 3 T 细胞中的产生。H2O2 能够上调VEGF mRNA 在MOLT? 3 细胞中的水平并有一定的剂量依赖性。PEDF 通过抑制活性氧族的产生来抑制Ang?II 介导的VEGF 在MOLT? 3 T 细胞中的增高。但PEDF 不会阻止血管紧张素II 和其受体的结合[21]。
  2 脉络膜新生血管性疾病
  脉络膜新生血管(choroidal neovascularization,CNV)以往多被称为视网膜下新生血管(subretinal neovascularization,SRN),是眼内新生血管的重要表现形式之一,变性、遗传、炎症、肿瘤、外伤等多种原因均可导致脉络膜新生血管的发生,但CNV不是一个单独的疾病,而是许多视网膜脉络膜疾病共有的一种体征,与其相关的疾病至少有40余种,是眼科临床常见的一大类致盲性疾病,如年龄相关性黄斑变性(age?related macular degeneration,AMD),病理性近视(pathological myopia)黄斑变性、特发性CNV以及外伤等。其中AMD是发达国家老年人视力丧失的首要原因。CNV较多见于黄斑区,其原因可能为黄斑区视网膜具有高代谢、高需氧等特性,且血管分布又不同于其他部位。血管生成是一个复杂的过程,首先血管舒张、血管通透性增加、周围基质降解,接着内皮细胞 (endothelial cells,EC)活化、移行、增生、出芽生长并形成管腔,最后新生血管成熟、重塑构成血管网多种细胞因子参与新生血管的生成的调控,其中血管生成因子与血管抑制因子之间的平衡破坏是主要的因素之一。CNV的发生机制尚未完全阐明,通常认为,CNV生成与RPE?Bruch膜?脉络膜毛细血管复合体完整性的改变有关。视网膜外层的缺氧状态也可能参与了CNV的生成过程。来自脉络膜毛细血管的新生血管增生并穿过Bruch膜向内生长,进入Bruch膜与视网膜色素上皮层之间或者色素上皮与视网膜神经感觉层之间。CNV现有激光光凝、手术、药物及放射等多种治疗方法,但因CNV发生机制尚未阐明,且其特殊的血管层构造,导致目前的治疗方法均有限,或处于探索阶段,不能有效防治其发生、发展及复发,因CNV的发生和发展过程中有多种细胞因子及信号转导通路参与调控,随着CNV生成机制研究的深入,积极寻找对CNV病因抑制新生血管的有效疗法,将为未来从根本上治愈CNV性疾病提供可能。
  3 PEDF与脉络膜新生血管性疾病
  现有大量实验结果证实,PEDF在患有 CNV 患者的玻璃体中的缺乏导致了AMD的发生。PEDF 随着年龄的增长在玻璃体和房水中浓度的降低在AMD患者中是尤为显著的[22]。在激光诱导的脉络膜新生血管实验中,损伤后的不同时期视网膜和玻璃体内 PEDF的浓度,明显下降,PEDF表达和脉络膜新生血管(CNV)呈负相关。但经过全视网膜光凝治疗成功后, PEDF的表达增加[23],进一步说明了PEDF与脉络膜新生血管的密切相关性。Gehlbach等[24]用AdPEDF.11眼周注射治疗激光诱导 CNV模型,发现AdPEDF.11能抑制激光诱导的CNV。Rasmussen等[25]在玻璃体腔内注射 Ad(GV)PEDF(1×108~1×109)能够显著抑制激光诱导的脉络膜新生血管鼠模型、VEGF转基因鼠模型及早产性视网膜病模型所造成的新生血管化,且高达85%。Mori等[26]用rho/VEGF 转基因鼠及激光损伤所致CNV鼠模型进行实验,14d及21d分别处死一部分激光损伤所致CNV的小鼠及rho/VEGF转基因鼠,测定CNV及视网膜下新生血管的基线水平。剩下的小鼠给予玻璃体注射或视网膜下注射以腺病毒为载体的PEDF AdPEDF.11, 对照组注射腺病毒的空载体(AdNull.11) 。结果显示注药7d后rho /VEGF鼠组和10d后激光诱导组中,实验组血管增生的量远低于基线水平,并且明显低于空载体组及未注射组。TUNEL法染色示视网膜下注射 AdPEDF.11组脉络膜血管增生区可见TUNEL染色阳性细胞,新生血管退化,血管内皮细胞凋亡。说明PEDF不仅可抑制视网膜和脉络膜新生血管形成,还可逆转已形成的新生血管。Mori等[27]利用腺相关病毒(AAV) 载体介导的PEDF进行实验,给予C57BL/6鼠玻璃体腔内及视网膜下注射腺相关病毒(AAV)载体介导的PEDF及对照物AAV2绿荧光蛋白 (AAV2GFP),4~6wk后用激光破坏Bruch’s膜,结果显示注药6wk后实验组眼内的PEDF水平为6~70ng,CNV明显减少,但空载体组和未注射组没有区别。以上相关试验均说明PEDF对于抑制CNV的有效性。
  4 展望
  会计论文发表
  当今CNV性疾病的治疗方法包括激光凝固或冷冻杀死小范围的细胞,减缓视力的下降。但由于这种治疗在保护视网膜的同时会引起视力的有限损害,而且它们的疗效会由于异常新生血管的复发而减弱。PEDF作为一种有效的神经营养和保护因子,具有强大的抗病理性血管形成功能,能够在增加疗效的同时最大限度地保护视力。在以PEDF作为药物治疗的大量实验中,Wong等[28]证实,其具有相对安全性,而且其抑制新生血管的作用具有选择性,大量实验表明,PEDF对于已成熟的血管无作用,只针对正在形成的和新生血管作用,在体外实验中[29], 证明其高效性。因此PEDF具有有广阔的临床应用前景。
  参考文献: 
   1 Schor CM, Tyler CW. Spatio?temporal properties of Panum?s fusional area. Vision Research 1981;21(5):683?692
  2 Schreiber K, Crawford JD, Fetter M, et al. The motor side of depth vision. Nature 2001;410(6830):819?822
  3 Van Rijn LT, Van der Steen J, Collewijn H. Instability of ocular torsion during fixation: cyclovergence is more stable than cycloversion. Vision Research 1994;34(8):1077?1087职称论文发表网
  4 Bruno P, van den Berg AV. Relative orientation of primary positions of the two eyes. Vision Research 1997;37(7):935?947
  5 Haslwanter T. Mathematics of three?dimensional eye rotations. Vision Research 1995;35(12):1727?1739
  6 Demer JL. Current concepts of mechanical and neural factors in ocular motility. Curr Opin Neurol 2006;19(1):4?13
  7 Fesharaki M, Karagiannis P, Tweed D, et al. Adaptive neural mechanism for Listing?s law revealed in patients with skew deviation caused by brainstem or cerebellar lesion. Invest Ophthalmol Vis Sci 2008;49(1):204?214
  8 Kono R, Clark RA, Demer JL. Active pulleys: magnetic resonance imaging of rectus muscle paths in tertiary gazes. Invest Ophthalmol Vis Sci 2002;43(7):2179?2188
  9 Melis BJ, Van Gisbergen JA. Analysis of saccadic short?term plasticity in three dimensions. Vision Research 1995;35(23?24):3423?3437
  10  Maxwell JS, Graf E W, Schor CM. Adaptation of torsional eye alignment in relation to smooth pursuit and saccades. Vision Research 2001;41(27):3735?3749
  11 Taylor MJ, Roberts DC, Zee DS. Effect of sustained cyclovergence on eye alignment: rapid torsional phoria adaptation. Invest Ophthalmol Vis
  Sci 2000;41(5):1076?1083
  12 Howard IP, Sun L, Shen X. Cycloversion and cyclovergence: the effects of the area and position of the visual display. Experimental Brain
  Research 1994;100(3):509?514
  13 Mitsudo H, Kaneko H, Nishida S. Perceived depth of curved lines in the presence of cyclovergence. Vision Res 2009;49(3):348?361
  14  Ibbotson MR, Price NS, Das VE, et al. Torsional eye movements during psychophysical testing with rotating patterns. Exp Brain Res 2005;160(2):264?267职称论文发表网
  15 Van Rijn LJ, Van der Steen J, Collewijn H. Visually induced cycloversion and cyclovergence. Vision Research 1992;32(10):1875?1883
  16 Kushner BJ, Hariharan L. Observations about objective and subjective ocular torsion. Ophthalmology 2009;116(10):2001?2010
  17 Diamond S, Markham CH. Ocular counterrolling as an indicator of vestibular otolith function. Neurology 1983;33(11): 1460?1469
  18 Kori AA, Schmid Priscoveanu A, Straumann D. Vertical divergence and counterroll eye movements evoked by whole?body position steps about the roll axis of the head in humans. J Neurophysiol 2001;85(2):671?678
  19 Scherberger H, Cabungcal JH, Hepp K, et al. Ocular counterroll modulates the preferred direction of saccade?related pontine burst neurons in the monkey. J Neurophysiol 2001;86(2):935?949
  20 Aw ST, Todd MJ, Halmagyi GM. Latency and initiation of the human vestibuloocular reflex to pulsed galvanic stimulation. J Neurophysiol 2006;96(2):925?930
  21 Migliaccio AA, Della Santina CC, Carey JP, et al. The effect of binocular eye position and head rotation plane on the human torsional vestibuloocular reflex. Vision Research 2006;46(16):2475?2486
  22 Bergamin O, Straumann D. Three?dimensional binocular kinematics of torsional vestibular nystagmus during convergence on head?fixed targets in humans. J Neurophysiol 2001;86(1):113?122
  23 Maxwell JS, Schor CM. Adaptation of torsional eye alignment in relation to head roll. Vision Research 1999;39(25):4192?4199
  24 Gresty MA, Bronstein AM, Brandt T, et al. Neurology of otolith function. Peripheral and central disorders. Brain 1992;115(Pt3):647?673
  25 Lueck CJ, Hamlyn P, Crawford TJ, et al. A case of ocular tilt reaction and torsional nystagmus due to direct stimulation of the midbrain in man. Brain 1991;114(Pt 5):2069?2079
  26 Walker MF, Zee DS. Cerebellar disease alters the axis of the high?acceleration vestibuloocular reflex. J Neurophysiol 2005;94(5):3417?3429
  27 Wong AM, Sharpe JA. Cerebellar skew deviation and the torsional vestibuloocular reflex. Neurology 2005;65(3):412?419
  28 Hess BJ. Control of ocular torsion in the rotational vestibulo?ocular reflexes. Prog Brain Res 2008;171:199?206
  29 Chin S, Fukushima K, Fukushima J, et al. Ocular torsion produced by unilateral chemical inactivation of the cerebellar flocculus in alert cats. Current Eye Research 2002;25:133?138
  30 Walker MF, Tian J, Shan X, et al. Lesions of the cerebellar nodulus and uvula in monkeys: effect on otolith?ocular reflexes. Prog Brain Res 2008;171:167?172
  31 Ying HS, Darbandi B, Shan X, et al. Quantitative eye movement recordings in a patient with acquired bilateral superior oblique palsy before and after a bilateral Harada?Ito procedure. Strabismus 2007;15(3): 137?147


  核心期刊网(www.hexinqk.com)秉承“诚以为基,信以为本”的宗旨,为广大学者老师提供投稿辅导、写作指导、核心期刊推荐等服务。
  核心期刊网专业期刊发表机构,为学术研究工作者解决北大核心CSSCI核心统计源核心EI核心等投稿辅导咨询与写作指导的问题。

  投稿辅导咨询电话:18915033935
  投稿辅导客服QQ: 论文投稿1002080872 论文投稿1003158336
  投稿辅导投稿邮箱:1003158336@qq.com
------分隔线----------------------------
栏目列表  
推荐论文  
热点论文  
 
QQ在线咨询
投稿辅导热线:
189-1503-3935
微信号咨询:
18915033935
网站简介 核刊总览 普刊专栏 期刊验证 学术答疑 服务流程 写作指南 支付方式 信用说明 联系我们
CopyRight © 2013 All Rights Reserved.
免责声明:本站提供投稿辅导 论文投稿 投稿辅导 核心期刊检索 核心投稿辅导等服务,本站刊载文章仅代表作者观点
并不意味着本站认同,部分作品系转载,版权归原作者或相应的机构;若某篇作品侵犯您的权利,请来信告知:1003158336@qq.com